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猪圆环病毒2型河北株的全基因组克隆与系统进化分析

     网络  2015-12-24 11:24:00
【导读】摘 要:应用PCR方法从疑似断奶仔猪多系统衰竭综合征(PMWS)的死亡仔猪组织病料中扩增出PCV-2全基因组(1 767bp),将此基因片段克隆入pMD20-T载体,筛选获得重组质粒pMD-PCV2并对其进行序列测定,然后对全基因组进行同源性和遗传进化分析...

摘 要:应用PCR方法从疑似断奶仔猪多系统衰竭综合征(PMWS)的死亡仔猪组织病料中扩增出PCV-2全基因组(1 767bp),将此基因片段克隆入pMD20-T载体,筛选获得重组质粒pMD-PCV2并对其进行序列测定,然后对全基因组进行同源性和遗传进化分析。结果表明,PCV-2分离毒株与参考株的全基因组同源性介于94%~98.4%之间,ORF1的同源性介于97.0%~98.8%,ORF2的同源性略低,介于91.9%~98.4%之间。该毒株与荷兰株、广西株和上海株等在一个进化分支上。本研究有助于监测PCV-2的疫源和进化关系,为进一步深入研究病毒基因功能奠定一定基础。

关键词:猪圆环病毒2型;基因组;克隆;序列分析

圆环病毒(Porcine circovirus,PCV)与鸡贫血病毒(Chicken anemiavirus,CAV)、鹦鹉喙羽病毒(Psittacine beak and feather diseasevirus,PBFDV)和一些植物病毒同属于圆环病毒科(Circoviridae)成员。病毒粒子为20面体对称,以滚环方式进行复制,该病毒的基因组是一种环状、无囊膜、单链DNA。

PCV-2病毒是由Allan G M等首先从患断奶仔猪多系统衰弱综合征(Post-weaning multisystemic wastingsyndrome,PMWS)的猪群中分离到的,被证明为PMWS的重要病原之一。目前在德国、法国、西班牙、加拿大、美国、日本和印度等国家和中国已有检测到PCV-2的相关报道。病猪表现为生长缓慢,消瘦,贫血,黄疸,呼吸困难,剖检可见淋巴结肿大,肝硬变,多灶性黏液脓性支气管炎,间质性肺炎,病死率达50%左右,存活猪成为僵猪。PCV-2常和猪繁殖与呼吸综合征病毒、细小病毒、伪狂犬病毒混合感染,造成猪的免疫接种失败,给养猪业带来重大经济损失。

本研究旨在采用PCR方法克隆得到河北保定(HBBD0608)株PCV-2全基因组,并对其进行序列分析,为该病毒的分子生物学、流行病学、致病机理等相关领域的研究奠定基础。

1 材料与方法

1.1 病料、质粒、菌种

PCV-2由河北省保定市某猪场的送检病料中分离,命名为HBBD0608株;感受态细胞DH5α、载体pMD20-TVector购自宝生物工程(大连)有限公司,载体pEGFP-N1和PK-15细胞由本实验室保存。

1.2 试剂

PCR试剂盒,DNAMarker,DNA提取试剂盒,DNA片段回收试剂盒,IPTG,X-gal购自宝生物工程(大连)有限公司、质粒提取试剂盒购自博大泰克公司;各种限制性内切酶,购自Promagar公司;限制胜内切酶HindⅢ、KpnⅠ购自美国Promega公司。其他试剂均为国产分析纯试剂。

1.3 病毒培养

取采自河北保定市某猪厂的经过鉴定为PCV-2的阳性病料组织,研磨后制成悬浮液,冻融3次,8 000 r/min离心10min,取上清,加青霉素(100单位/mL)、链霉素(100 μg/mL)4 ℃作用8 h后,接种PK15细胞,培养48 h~72h传一代,共传8代。

1.4 引物的设计与合成

根据已发表的PCV-2序列(GenBank:登录号为No.DQ218420)设计一对特异性克隆测序引物PCV-2-F5′-CGATAAGCTTACCAGCGCACTTCGGCAGCGGCA-3′;PCV2-R:5′-GCTTGGTACCACTTACAGCGCACTTCTTCG-3′。包含HindⅢ、KpnⅠ两个酶切位点,可扩增长为1 767 bp的核苷酸序列。引物由宝生物工程(大连)有限公司合成,使用浓度为20 pmol/μL。

1.5 模板的制备

取培养细胞悬液,按照宝生物工程(大连)有限公司DNA提取的试剂盒说明书提取细胞DNA。

1.6 PCV-2全基因组PCR扩增

用1.5制备的病料DNA为摸板,用引物PCV2-F、PCV2-R扩增出带有HindⅢ、KpnⅠ酶切位点的PCV-2全基因组大小为1 767 bp的DNA片段。PCR反应总体系为50μL,反应成分如下:LA-Taqbuffer 5μL,2.5 mmol/L dNTPs 4 μL,上下游引物各1 μL,模板DNA 4 μL,LA-Taq(TaKaRa PCR? Kit Ver.2.1)0.5 μL,加超纯水至总体积50 μL。扩增PCV-2全基因组的PCR程序为:95℃ 10 min;94 ℃ 1 min,56 ℃ 1 min,72 ℃ 2 min,共35个循环;72 ℃延伸10 min,4℃保存。

1.7 PCR产物的克隆与测序

将PCR产物用10 g/L琼脂糖凝胶电泳,切下含目的条带的凝胶,按说明书用DNA回收试剂盒回收PCR产物,按常规方法与pMD 20-T载体进行连接;将连接产物转化大肠埃希菌DH5α感受态细胞,37 ℃培养12h,挑取上述转化平皿中的白色菌落,接种到含有Amp(100 μg/mL)的LB液体培养基中,37℃振荡培养过夜至混浊,提取质粒并进行酶切鉴定后送宝生物工程(大连)有限公司测序。

1.8 序列分析

将阳性重组质粒送宝生物工程(大连)有限公司测序,将测序结果利用DNAStar生物学软件与国内外发表的PCV序列进行同源性和系统进化分析。

2 结果

2.1 PCR扩增产物电泳结果

PCV-2全基因组PCR产物经琼脂糖凝胶电泳分析,用设计的引物都成功地扩增出预期的目的条带,其大小都约为1 767bp,与预期的大小一致(图1)。

2.2 PCV-2全基因组的PCR产物克隆入pMD20-T载体

PCV-2全基因组分别用PCV2-F、PCV2-R扩增的PCR产物克隆入pMD20-T载体,获得的重组质粒pMD -PCV2经HindⅢ、KpnⅠ双酶切,出现了约1 767bp的条带(图2),说明两对引物扩增PCV-2全基因组已成功克隆入pMD20-T载体。测序结果证实PCV-2 DNA克隆正确。 

1~2.PCV-2基因组;3.DNA标准DL 2 000 

1-2.PCV-2 genome;3.DNA Marker DL 2 000 

图1 PCV-2全基因组的PCR扩增

Fig.1 PCR amplification of PCV-2 genome

1~2.重组质粒T-PCV-2酶切产物;3.以重组质里粒为模板的PCR产物;4.DNA标准DL250

1-2.PMD-PCV-2(DB)/HindⅢ,KpnⅠ;3.PCR product amplified from recombinent plasmid;4.DNA MarkerDL250

图2 重组质粒T-PCV-2酶切及PCR鉴定

Fig.2 Iditification of recombinant plasmid T-PCV-2 by restrictionendonuclease digestion

2.3 测序结果、同源性比较及系统进化分析

如图3,分离得到的PCV-2河北(HBBD)株与荷兰的AF201897分离株同源性最高,为98.4%,与广西分离株EF675237、上海分离株No.AY291318和山东分离株DQ218420的同源性分别为98.2%,98.1%和98%。与丹麦EU148507分离株同源性最低为94%。

图3 遗传进化树

Fig.3 Phylogenetic tree

从图3系统进化树可以看出,PCV-1和PCV-2两个基因型差异较大,明显分为两支,2株PCV-1分离株之间的基因组序列同源性为99.6%,PCV-2各分离株基因组序列之间的同源性在93.0%以上。但PCV-1和PCV-2分离株之间只有70%左右的同源性。所选PCV-2分离株共分成两个大的分支,两个分支中一支以基因组长度为1767 bp的为主,另一支以1 768bp为主。分离株的同源性与国别并无特别的联系,分离株与荷兰株(AF201897)的同源性最高,美国分离株(AF147751)和南非分离株(AY325495)同源性高达99%,美国分离株(AF147751)和日本分离株(BD309028同源性高达99.1%,日本分离株(BD309028)和南非分离株(AY325495)同源性高达99.7%,我国的广西株(EF675237)与荷兰株(AF201897)同源性为99.8%,同时也验证了PCV-2的全基因组核酸序列比较保守的说法。

3 讨论

目前PCV-2已经在世界范围内广泛存在,其全基因组大小有1 767 bp和1 768bp两种,本研究所克隆的河北省保定株PCV-2全基因大小为1 768bp,与其基因组大小相同的毒株同源性较高,在95.5%~98.4%之间;而与全基因大小为1 768bp的毒株同源性低一些,在94%~96%之间。由此可见,所有PCV-2毒株的核苷酸序列都有较高的同源性,说明PCV-2毒株间的亲缘关系很近,PCV-2病毒进化速度较慢。

PCV-2基因组含有11个开放阅读框(ORF),组成单股环状双向DNA,由2个头头相对排列的ORF和其间的基因间隔区组成,包含复制酶相关基因(Rep)、结构蛋白或衣壳蛋白基因(Cap)及病毒DNA复制起始区茎环序列。其中较大的ORF1(819nt~1 759 nt)经病毒正向DNA转录,为Rep基因,编码病毒复制酶相关蛋白(Rep);较小的ORF2(34 nt~736 nt)经病毒DNA互补链转录,为cap基因,编码大小约27.9 ku的病毒主要结构蛋白或衣壳蛋白(Cap)。在PCV-2的11个阅读框中,研究较深入的是ORF1和ORF2。Nawagitgul P等认为ORF1编码蛋白与PCV的复制有关,而ORF2编码结构蛋白,用杆状病毒表达ORF2基因发现,在电镜下能观察到ORF2蛋白可以自我装配成病毒衣壳样颗粒。

虽已证明PCV-2是PMWS的主要病原,但目前为止,还没有有效的疫苗预防此病。有报道称使用纯化的病毒为抗原研制诊断试剂,但因为病毒的体外培养困难,加上病毒粒子太小,分离纯化困难,因而代价太高。采用原核表达系统制备重组病毒抗原蛋白,可以做到产量高,成本低,加上比较成熟的蛋白分离技术,可以大大提高诊断反应的敏感性和特异性。韩凌霞等将Rep和Cap基因的部分片段亚克隆到大肠埃希菌表达载体上进行表达,发现Cap蛋白羧基端部分是诊断PCV-2感染的良好抗原。本试验所分离测定的PCV-2河北株基因组全长为1767 bp,用DNAStar生物学软件与国内外发表序列进行同源性分析发现,PCV-2分离毒株与参考株的全基因组同源性介于94.0%~98.4%之间,ORF1的同源性介于97.0%~98.8%,ORF2的同源性介于91.9%~98.4%之间。对流行毒株的Cap基因进行克隆表达,获得的重组抗原蛋白对该病的诊断和预防具有很好的应用前景。同时利用该毒株进行PCV-2的分子生物学、流行病学、致病机理等相关领域的研究应该具有一定的代表性。


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